产品目录

本试剂盒是在植物RNA提取试剂盒的基础上经过配方和流程优化得到的无酚无氯仿升级产品，它结合了植物RNA提取试剂盒的高效性、快捷性以及无氯仿处理的安全性。提取得到的RNA可直接用于RT-PCR、Northern杂交和cDNA合成等实验。

• 免酚和氯仿处理，操作安全可靠。
  
• 简单快速，处理一个样品只需要约十分钟。
  
• RNA纯度更高，平均OD260/280一般都在2.0左右，能够有效去除大多数植物中的多糖污染。
  
• 目前已测试过上百种植物。

• 估算组织细胞的用量。每次微量提取一般需要50～100mg植物叶片、或30～50mg植物种子、或100～200mg植物果实。不能多加，否则容易堵柱。无氯仿提取处理的量比常规的加氯仿处理量要少一倍，否则非常容易堵柱，但是否堵柱又取决于植物组织的多糖多酚的浓度。
  
• 匀浆法裂解样品：先将新鲜植物组织剪切成小块放入10～15mL塑料离心管中，加入1mL溶液A，然后用匀浆器匀浆5～20秒。匀浆时会产生泡沫，但不影响提取效果。
  
• 或液氮研磨法裂解样品（适用于复杂，易降解样品）：取适量新鲜植物组织放入含液氮的研钵中，迅速将组织研磨成粉末后，将粉末转移到合适的塑料离心管中，
  加入1mL溶液A，立即剧烈振荡20秒，充分混匀。
  
• 将匀浆物或液氮研磨物转移至干净的1.5mL塑料离心管中(可以不必转移非液体的细胞碎片)。有的植物组织(比如果实)含有大量水份，匀浆液会多于1mL，转移时也只取1mL。
  
• 室温15000g离心3～5分钟，管底沉淀为细胞破碎物。
  
• 将上清液(约1mL）转移到另一干净的2mL塑料离心管中。
  
• 加入等体积的无酚无氯仿植物RNA提取溶液B，充分颠倒混匀。如果有沉淀产生(对某些植物，属于正常现象)，不必去掉沉淀，把所有的混合物上柱。
  
• 将0.7mL的混合溶液转移到离心吸附柱中，15000g室温离心3到5分钟，弃穿透液。如果离心吸附柱里面有残留液体没穿透，可以延长离心时间直到彻底穿透。
  
• 将剩下的混合溶液按每次0.7mL的方式转移到同一离心吸附柱中，每次15000g室温离心3～5分钟，弃穿透液。
  
• 由于混合液有2mL左右，所以三次转移即可将混合液全部挂柱。
  
• 加0.7mL通用洗柱液，室温15000g离心半分钟，弃穿透液。如果离心吸附柱里面有残留液体没穿透，可以延长离心时间直到彻底穿透。
  
• 再加0.3mL通用洗柱液，室温15000g离心半分钟，弃穿透液。
  
• 15000rpm室温离心10秒以便去除残留液体。此步很重要，否则残留的乙醇会影响RNA的使用。
  
• 将离心吸附柱转移到RNase-free收集管中，加入50μL RNA洗脱液，室温放置2分钟。
  
• 15000g室温离心半分钟，离心管中溶液即为RNA样品，可以立即使用或存放于-80℃待用。

• RNA完整性的电泳检测：如果需要做Northern杂交，强烈建议用户使用甲醛变性胶进行RNA电泳，因为非变性胶不能分离所有的RNA分子。
  
• RNA产量产率测定：将5～10μL RNA溶于TE缓冲液中(pH7.5～8.2之间)检测其在OD260的光吸收。通过光吸收可以得出RNA浓度(1 OD260的RNA=40μg/mL)，进而计算出RNA的产量(浓度×体积)和产率(RNA产量/组织用量)。
  
• RNA纯度测定：无污染的总RNA的OD260/OD280一般在1.8～2.1之间(具体数值与其碱基组成和溶液成分等多种因素有关)，高于此范围则分别表示样品可能有蛋白质污染，但一般不影响RT-PCR等反应。